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小鼠角質(zhì)細(xì)胞的分離和培養(yǎng)

2015-8-5  閱讀(1679)

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實(shí)驗(yàn)試劑



HBSS: 
NaCl 8g/L
KCl 400mg/L
KH2PO4 60mg/L
無(wú)水Na2PO4 47.86mg/L
無(wú)水葡萄糖 1000mg/L
NaHCO3 350mg/L


錨點(diǎn)

實(shí)驗(yàn)材料


妊娠期BALB/c小鼠


錨點(diǎn)

實(shí)驗(yàn)步驟


1. 將1~2天齡新生裸鼠窒息后,置于培養(yǎng)皿中,用1%碘聚乙烯吡咯烷酮液洗凈裸鼠,流水*沖洗,然后用70%乙醇洗兩次。小鼠應(yīng)立即使用,若待處理的小鼠數(shù)量較多,可置冰上30min。
2. 去除小鼠的四肢和尾巴。
3. 將小鼠從尾巴至鼻子的皮膚作一簡(jiǎn)單切口,用大鼠牙齒鑷輕輕將整個(gè)身體的皮膚剝下,用一把鑷子夾住身體,另一把鑷子拉開(kāi)皮膚。
4. 將剝下的皮膚組織置于放在冰上的無(wú)菌培養(yǎng)皿表面,直至所有的皮膚收集完畢。
5. 用2把大鼠牙齒鉗夾住皮膚組織,在含2.5%胰蛋白酶的HBSS無(wú)菌培養(yǎng)皿中漂洗皮膚組織(組織在下),然后置4oC過(guò)。表皮不應(yīng)淹沒(méi)在胰蛋白酶液中。
6. 從胰蛋白酶處理液中取出組織,將表皮面朝下置于干燥的無(wú)菌細(xì)胞培養(yǎng)皿表面。表皮易于貼附于塑料上,組織用組織鉗扯去,鼠齡與此有影響,天齡越大,去其表皮越困難。
7. 用剪刀小心地將表皮殘留物剪碎,置于含“常規(guī)"培養(yǎng)液(MEM含10%FCS,100IU/ml青霉素,100ug/ml鏈霉素,2~4mmol/L L-谷氨酰胺;每5只小鼠皮膚用10ml)的無(wú)菌燒瓶中,磁力攪拌器37oC劇烈攪拌45min。
8. 用4層無(wú)菌Nitex紗布(16um孔,Martin提供)過(guò)濾液體。當(dāng)其他細(xì)胞通過(guò)時(shí)角質(zhì)層細(xì)胞留在紗布的表面。
9. 用培養(yǎng)瓶將細(xì)胞洗下,培養(yǎng)基的用量約為一塊皮膚10ml,將細(xì)胞接種于塑料細(xì)胞培養(yǎng)瓶中或玻璃蓋玻片上,37oC培養(yǎng)4~12h。
10. 4~12h后觀察培養(yǎng)皿表面的細(xì)胞群。
11. 將細(xì)胞轉(zhuǎn)移至低鈣培養(yǎng)液,角質(zhì)細(xì)胞將開(kāi)始繁殖。這種轉(zhuǎn)移防止細(xì)胞的分層。低鈣液由MEM(無(wú)鈣)和10%螯合的FCS(同樣含有正常水平的青霉素、鏈霉素)組成。螯合的血清按下法準(zhǔn)備:每50ml血清需20g樹(shù)脂,Chelex 100(Bio-Rad)。將樹(shù)脂置于水中,40g/L,pH約為7.4,放置濾紙于漏斗上,過(guò)濾樹(shù)脂。加入樹(shù)脂于FCS中,攪拌60min。接著過(guò)濾使血清變得清亮,再用0.45ug濾紙除菌。后者過(guò)濾過(guò)程較慢。需用購(gòu)買(mǎi)的商品化濾器。*培養(yǎng)液中鈣離子濃度約為0.09mmol/L,與0.15mmol/L鈣濃度相比這是普通培養(yǎng)液。


錨點(diǎn)

注意事項(xiàng)


小鼠角質(zhì)細(xì)胞在低鈣中維持至1周時(shí)間,盡管細(xì)胞活力有所降低??赏ㄟ^(guò)商業(yè)途徑如Clonetics和GIBCO/BRL獲得書(shū)中低鈣、無(wú)血清培養(yǎng)液培養(yǎng)角質(zhì)細(xì)胞。膠質(zhì)細(xì)胞在這種培養(yǎng)液中能保存較長(zhǎng)時(shí)間,并在多數(shù)情況下進(jìn)行幾次分裂。為了誘導(dǎo)角質(zhì)細(xì)胞分層,應(yīng)向細(xì)胞中加入正常水平的鈣。
使用一次性塑料組織培養(yǎng)器材,而不是玻璃器材。若確需使用玻璃器材,應(yīng)用酸浸泡后再行高壓滅菌。需要使用的器材還有大叔牙齒鉗、尖解剖剪、活組織吸取器。上述器材應(yīng)高壓滅菌或在95%乙醇中浸泡、燒灼。

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