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蛋白質(zhì)技術(shù)專(zhuān)題:雙向電泳操作步驟

2013-11-27  閱讀(1287)

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水化上樣( 被動(dòng)上樣)

1. 從冰箱中取出 IPG 膠條,室溫放置 10min。

2. 沿水化盤(pán)槽的邊緣從左向右線性加入樣品,槽兩端各 1cm 左右不加樣,中間的樣品液一定要連貫。注意:不要產(chǎn)生氣泡,否則會(huì)影響膠條中蛋白質(zhì)的分布。

3. 用鑷子輕輕撕去 IPG 膠條上的保護(hù)層。注意:堿性端較脆弱,應(yīng)小心操作。

4. 將IPG膠條膠面朝下輕輕置于水化盤(pán)中樣品溶液上。注意:不要將樣品溶液弄到膠條背面,因?yàn)檫@些溶液不會(huì)被膠條吸收; 還使膠條下面的溶液產(chǎn)生氣泡。如產(chǎn) 生了氣泡,用鑷子輕輕地提起膠條的一端,上下移動(dòng)膠條,直到氣泡被趕走。

5. 放置 30~45min 大部分樣品被膠條吸收,沿著膠條緩慢加入礦物油,每根膠條 約 3ml(17cmIPG),防止膠條水化過(guò)程中液體蒸發(fā)。

6. 置等電聚焦儀于- 20℃水化 11~15h。

*向 等電聚焦

1. 將紙電極置于聚焦盤(pán)的正負(fù)極上,加 ddH2O 5~8μl 潤(rùn)濕。

2. 取出水化好的膠條,提起一端將礦物油瀝干,膠面朝下,將其置于剛好潤(rùn)濕 的濾紙片上雜交以去除表面上的不溶物。

3. 將 IPG 膠條膠面朝下置于聚焦盤(pán)中,膠條的正極(標(biāo)有+)對(duì)應(yīng)于聚焦盤(pán)的正 極,確保膠條與電極緊密接觸。

4. 在每根膠條上覆蓋 2- 3ml 礦物油。

5. 對(duì)好正、負(fù)極,蓋上蓋子。設(shè)置等電聚焦程序。

6. 聚焦結(jié)束的膠條,立即進(jìn)行平衡、第二向 SDS-PAGE電泳?;?qū)⒛z條置于樣 品水化盤(pán)中,- 20℃冰箱保存,電泳前取出膠條, 室溫放置10 分鐘,使其溶解。

第二向 SDS-PAGE電泳

1. 配制 12%的丙烯酰胺凝膠。

2. 待凝膠凝固后, 倒去分離膠表面的MilliQ水、 乙醇或水飽和正丁醇,用MilliQ 水沖洗。

3. 配制膠條平衡緩沖液 I

4. 在桌上先放置干的厚濾紙,聚焦好的膠條膠面朝上放在干的厚濾紙上。將另 一份厚濾紙用 MilliQ水浸濕,擠去多余水分,然后直接置于膠條上,輕輕吸 干膠條上的礦物油及多余樣品,這樣可以減少凝膠染色時(shí)出現(xiàn)的縱條紋。

5. 將膠條轉(zhuǎn)移至樣品水化盤(pán)中,加入 6ml(17cmIPG)平衡緩沖液 I ,在水平搖床 上緩慢搖晃 15 分鐘。

6. 配制膠條平衡緩沖液 II 。

7. *次平衡結(jié)束后,取出膠條將之豎在濾紙上瀝去多余的液體,放入平衡緩 沖液 II 中,繼續(xù)在水平搖床上緩慢搖晃 15 分鐘。

8. 用濾紙吸去 SDS-PAGE膠上方玻璃板間多余的液體,將二向凝膠放在桌面上, 凝膠的頂部面對(duì)自己。

9. 將瓊脂糖封膠液加熱溶解。

10. 在 100ml 量筒中加入 TGS 電泳緩沖液。

11. 第二次平衡結(jié)束后,取出膠條,用濾紙吸去多余的平衡液(將膠條豎在濾紙 上,以免損失蛋白或損壞凝膠表面) 。

12. 用鑷子夾住膠條的一端使膠面*浸末在 1×電泳緩沖液中漂洗數(shù)次。

13. 將膠條背面朝向玻璃板,輕輕放在長(zhǎng)玻板上,加入低熔點(diǎn)瓊脂糖封膠液。

14. 用適當(dāng)厚度的膠片,輕輕地將膠條向下推,使之與聚丙烯酰胺凝膠膠面*接 觸。注意:不要在膠條下方產(chǎn)生氣泡, 應(yīng)推動(dòng)凝膠背面的支撐膜, 不要碰到面膠。

15. 放置 5 分鐘,使低熔點(diǎn)瓊脂糖封膠液凝固。

16. 打開(kāi)二向電泳制冷儀,調(diào)溫度為 15℃。

17. 將凝膠轉(zhuǎn)移至電泳槽中,加入電泳緩沖液,接通電源,起始時(shí)用的低電流(5mA~10mA/gel/17cm) ,待樣品在*走出IPG 膠條,濃縮成一條線后,再加大電流 (20-30mA/gel/17cm) 待溴酚藍(lán)指示劑達(dá)到底部邊緣時(shí)即可停止電泳。

18. 電泳結(jié)束后,輕輕撬開(kāi)兩層玻璃,取出凝膠,并切角以作記號(hào)(戴手套,防 止污染膠面) 。

19. 進(jìn)行染色。

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